ChIP 實驗 protocol 下載：標準流程 + 常見問題解決
2025-07-23 17:15:10
來源/作者：普拉特澤-生物醫學整體課題外包平臺
前兩篇我們總結了chip實驗中ChIP-seq 與 ChIP 實驗的區別、chip實驗重復性差等常見問題，今天來學習chip實驗操作時最容易碰見一些問題吧，希望大家引以為鑒，能夠避免這些普拉特澤為大家踩過的坑。
上篇：ChIP-seq 與 ChIP 實驗的區別，一篇文章講清楚
中篇：ChIP 實驗重復性差？教你 3 個提高實驗穩定性的秘訣
鏈接奉上，大家快點踩著普拉特澤的肩膀去摘蘋果吧！那現在我們來接著總結：
抗體：驗證過的ChIP級抗體（建議查閱CiteAb或廠商驗證數據）
交聯試劑：1%甲醛（活細胞）或DSG+甲醛（難交聯蛋白）
超聲破碎儀：確保DNA片段化至200-500bp（關鍵步驟！）
磁珠：Protein A/G磁珠（根據抗體宿主物種選擇）
細胞量：通常需1×10^6~1×10^7個細胞/IP
交聯時間：甲醛10-15分鐘（過長會導致抗原遮蔽）
終止交聯：用125mM甘氨酸淬滅10分鐘
超聲條件優化：
使用Bioruptor或Covaris超聲儀
輸出功率：30%振幅，30s ON/30s OFF，循環6-8次
關鍵驗證：跑膠檢測片段大小（目標200-500bp）
抗體用量：1-5μg/IP（需預實驗優化）
孵育條件：4℃旋轉過夜（避免非特異性結合）
洗滌緩沖液：
Low Salt Wash Buffer (150mM NaCl)
High Salt Wash Buffer (500mM NaCl)
LiCl Wash Buffer (250mM LiCl)
解交聯：65℃ 4-6小時（含蛋白酶K）
純化：采用酚 - 氯仿抽提法或商用 DNA 純化試劑盒
qPCR驗證：設計目標區域引物（陽性/陰性對照必需）
測序準備：文庫構建適用于ChIP-seq
二、ChIP實驗常見問題與解決方案
問題1：信號弱或無富集
可能原因：
? 抗體效率低（解決方案：使用ChIP驗證過的抗體，如Abcam的"ChIP+")
? 交聯不足（解決方案：嘗試DSG+甲醛雙交聯）
? 片段化不完全（解決方案：優化超聲條件，檢測片段大小）
問題2：高背景噪音
可能原因：
? 非特異性抗體結合（解決方案：增加預清除步驟，使用IgG對照）
? 洗滌不徹底（解決方案：增加High Salt Wash次數）
問題3：DNA片段過大或過小
? 片段>1000bp：超聲功率不足（增加振幅或時間）
? 片段<200bp：過度超聲（減少超聲循環次數）
問題4：qPCR無擴增
? DNA損失：檢查純化步驟，換用柱式純化試劑盒
? 引物設計問題：確保靶區域包含預測結合位點
三、高階技巧：如何提升ChIP成功率？
1. 陽性/陰性對照必做：
? 陽性對照：已知結合位點（如GAPDH啟動子）
? 陰性對照：非目標區域（如基因沙漠區）
2. 多抗體驗證：尤其對新靶點，建議嘗試2-3種不同抗體
3. 超聲校準：每次實驗前用標準DNA樣本校準儀器
四、ChIP實驗方案優化案例
案例：某團隊研究轉錄因子 NF-κB 在炎癥反應中的 DNA 結合位點，初始 ChIP 實驗失敗。通過以下優化：
1. 改用 DSG + 甲醛雙交聯法
2. 優化超聲條件，使 DNA 片段大小控制在 300-500bp
3. 增加 High Salt Wash 的洗滌次數至 3 次
最終獲得高信噪比數據，相關成果發表于《Nucleic Acids Research》
如果你總是在做實驗時總會遇上這樣那樣的問題需要幫助時，請記得在ChIP 實驗中遇到技術問題可添加技術微信：18570028002
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