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前兩篇我們總結了QPCR檢測實驗詳細的操作步驟與結果報告，實驗目的都是通過QPCR實驗技術定量檢測基因表達量。今天來學習QPCR檢測實驗詳細的步驟與報告的最后一篇，最后祝大家科研順利~

上篇：QPCR檢測實驗詳細的步驟與報告（一）

中篇：QPCR檢測實驗詳細的步驟與報告（二）

鏈接奉上，大家快點踩著普拉特澤的肩膀去摘蘋果吧！那現在我們來接著總結：

一、實驗目的

通過QPCR實驗技術定量檢測基因表達量。

二、實驗樣品及分組
1.實驗樣本

備注：包括干預細胞用的相關試劑均按實驗樣品登記，每行登記一個或一組獨立樣品。
2.實驗分組

細胞： 293T

分組：OE-NC、OE-lnc BDNF-AS

指標： lncRNA BDNF-AS（NR_002832.2）

三、實驗結果

四、實驗材料
1.主要實驗儀器

2 主要實驗試劑及耗材

五、實驗原理

QPCR技術，是指在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號累積實時監測整個PCR進程，最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。根據熒光信號的變化能夠實時檢測PCR擴增反應中每一個循環擴增產物量的變化，通過Ct值和標準曲線的分析就能對起始模板進行定量分析。

六、實驗步驟

1.引物設計

2.樣品前期處理

向細胞樣本中加入500 μl Trizol。
3.RNA提取

(1)     向加有Trizol的1.5 ml EP管中加入100 μl氯仿，震蕩混勻后，靜置5 min，在12000 rpm，4度離心10 min。

(2)     從離心機中取出1.5 ml EP管，再將上層無色透明的水相層吸入到另一干凈的1.5 mlEP管中。（樣品會分為三層：下層有機相層，中間層和上層的水相層，RNA位于上層水相中。）加入等體積的異丙醇，上下輕輕顛倒混勻之后，靜置10 min，再12000 rpm，4度離心10 min。

(3)     離心之后可在EP管壁或管底看到膠狀沉淀出現，沉淀就是要提取的RNA。小心棄去上清，不要將沉淀倒掉了。

(4)     用1 ml 75℅乙醇對RNA沉淀進行洗滌。然后于4℃ 7000 rpm離心5分鐘，將上清盡量去除干凈。

(5)      室溫靜置干燥，大約干燥5～10分鐘即可。（不要真空離心干燥，過于干燥會導致RNA的溶解性大大降低）。所有EP管中加入25 μl 的DEPC H₂O，用槍頭吹打幾次，使RNA充分溶解，-80℃保存。

(6)     RNA濃度檢測：使用核酸蛋白檢測儀檢測RNA濃度。

4.逆轉錄PCR

1. 按以下組份分別配制逆轉錄反應液

2. cDNA立刻進行實驗或者置于4℃保存。

5.RNA濃度及純度測定：

（見實驗結果部分）
七、實時熒光定量PCR反應
1.  反應體系的配置

2..  反應條件設置：
擴增程序：

熔解程序：

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