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        關節炎模型造模實驗步驟由普拉特澤生物分享，上期我們分享了《關節炎造模的造模方法》，骨關節炎以進行性的關節軟骨退變、滑膜炎癥、軟骨下骨改變和骨贅形成為特征，關節炎動物模型可以直觀研究關節炎病的致病機制發病原因等，是臨床研究關節炎的重要方法。普拉特澤生物動物實驗平臺長期承接關節炎動物模型外包實驗，提供各種類型的關節炎動物模型外包服務，本文就來跟大家一起學習三種常用的關節炎動物模型造模方法：

        一、前交叉韌帶橫斷模型關節炎模型

        交叉韌帶是防止脛骨移位、維持膝關節穩定性的重要結構之一，與膝關節屈曲伸直位、肌肉收縮狀態、負重或非負重區都有關系。單純前交叉韌帶離斷術可以改變關節前向穩定，增大關節間活動度，增加骨摩擦，加快關節退行性變進程。

        造模過程（以大鼠為例）：

        1、大鼠按劑量腹腔注射10%的水合氯醛進行麻醉。

        2、麻醉后大鼠右后肢備皮消毒，在膝關節炎內側做一個縱向約3cm的切口，沿髕骨韌帶向上輕開一個小口，剪開肌肉，屈膝，將髕骨外翻。暴露交叉韌帶后，剪斷前交叉韌帶。

        3、然后進行抽屜實驗，確認前交叉韌帶是否完全斷離，逐層縫合傷口。

        二、關節腔內注射藥物關節炎模型

        關節對照組與模型組大鼠在實驗過程中未發生死亡或其它異常情況，注射MSU造模2個月后，取大鼠膝關節骨組織固定，具體模型構建情況還需以病理檢測結果為準。

        1、購進的SD大鼠適應性飼養3天，期間正常飲水和喂食；

        2、實驗前一天對大鼠進行禁食16h，10%水合氯醛腹腔注射麻醉（0.4ml/100g）；

        3、剪去大鼠膝關節處毛發，暴露膝關節處皮膚，將配制好的MSU溶液稀釋至合適濃度，使用一次性注射器將5mg/50uL MSU注射到模型組大鼠的膝關節腔中，對照組注射同等體積的生理鹽水；

        4、注射完成后停頓3秒左右，緩慢將注射器拔出，按壓注射點數秒，將各組大鼠放回籠內，正常飼養；

        5、組織取材，每3天觀察各組大鼠狀態是否出現異常，若無異常，2個月后處死各組大鼠，取膝關節固定保存。

        三、關節制動法關節炎模型

        目前常采用的肢體制動體位有伸直位、屈曲位、中間位等對模型動物進行關節的機械性制動，最為經典的是Videman造模法。

        造模步驟（以兔子為例）：

        1、動物適應性喂養動物房12h-12h晝夜交替，保證兔子自由飲水、進食，溫度23-25℃，適應性喂養一周后進入實驗。

        2、兔子耳緣備皮，耳緣靜脈注射7%水合氯醛麻醉。

        3、兔子后肢備皮去毛，牽拉右腿使右膝關節處于伸直位，將兔右后肢于腹股溝以下1.5cm至裸關節下3cm（趾端）先包裹醫用無菌紗布，3層左右，石膏布浸水2-3min，小心擰干水分。

        4、將處理好后的石膏布于腹股溝以下1.5cm至裸關節下3cm（趾端）沿紗布繼續包裹（不可過松、過緊），約4-5層，最后用醫用膠帶纏裹固定。

        5、等石膏干硬（冬季可用吹風機加熱）后，將綁好后的兔子放回兔籠。

        6、制動2周軟骨病理呈早期OA改變，固定時間越長，病理程度越重。制動6周，造模關節X線出現關節間隙狹窄、唇樣增生等典型中晚期OA特征。

        7、取材拍照觀察實驗樣本。

        好啦，那關于骨關節炎模型的造模步驟就講完啦，希望可以幫到您~如果您覺得自己造模太繁雜有關節炎模型代做的需求，歡迎選擇普拉特澤生物~