
TSA 放大技術如何提升檢測信噪比?【TSA 檢測外包】
2025-09-25 11:45:59
來源/作者:普拉特澤-生物醫學整體課題外包平臺
抗體非特異性:多克隆抗體易與無關蛋白交叉反應,或一抗濃度過高導致非特異性吸附;
酪胺活性失控:高濃度酪胺或過長反應時間,使活化中間體擴散至靶標外區域,與組織中酪氨酸殘基非特異性結合;
抑制劑缺失:未有效阻斷樣本內源性過氧化物酶,其與 HRP 競爭底物,引發非特異性信號沉積。

清洗不徹底:抗體孵育后殘留的游離 HRP 二抗,會在后續反應中催化酪胺沉積,形成 “偽信號”;
抗原修復過度:過高溫度或過強 pH 值的修復液,破壞組織蛋白結構,增加抗體非特異性結合位點;
孵育條件不當:室溫長時間孵育加速酪胺擴散,或未搖勻導致反應不均,出現局部背景升高。

濾光片帶寬過寬:成像時相鄰熒光通道串色,如 Cy3 信號溢出至 FITC 通道,誤判為背景;
樣本本身干擾:肝臟、腎臟等組織含高濃度內源性過氧化物酶,或 FFPE 樣本固定不佳導致蛋白交聯異常,天然背景偏高。
抗體優先選 “單抗 + 驗證款”:相比多克隆抗體,單克隆抗體特異性更高,可減少交叉反應。優先選擇經 TSA 實驗驗證的抗體克隆,例如檢測 PD-L1 時選用經過 IHC-TSA 聯用驗證的兔單抗,而非通用型抗體。同時需做梯度稀釋測試:以傳統方法最優濃度為基準,設置 2 倍、4 倍稀釋梯度,例如 1:200、1:400、1:800,選擇 “信號清晰且背景最低” 的濃度。
酪胺試劑選 “可控活性型”:優先選擇含 “梯度濃度配比” 的試劑盒,如 TYR-xxxPlus 系列,可根據靶標豐度調整 1:50-1:400 的稀釋比例 —— 低豐度靶標用 1:50 增強信號,高豐度靶標用 1:400 避免過放大。避免使用無濃度梯度的散裝酪胺,易因濃度失控導致背景飆升。
配套試劑加 “特異性抑制劑”:針對高背景樣本,選擇含 “雙重封閉體系” 的試劑盒:用 10% 山羊血清(與二抗同屬種)封閉非特異性結合位點,再用 3% H?O?延長抑制內源性過氧化物酶(肝臟樣本建議孵育 60 分鐘)。
FFPE 樣本:精準抗原修復:采用 “pH 梯度適配法”,上皮組織用 pH 6.0 檸檬酸鹽緩沖液,間葉組織用 pH 9.0 Tris-EDTA 緩沖液,避免單一修復液導致的過修復或修復不足。修復后立即用冰 PBS 降溫終止反應,減少蛋白變性引發的非特異性結合。
高酶活性樣本:強化抑制:肝臟、腎臟樣本在封閉步驟前,增加 “甲醇 - H?O?預處理”:3% H?O?與甲醇按 1:9 混合,室溫孵育 30 分鐘,比單獨用 H?O?抑制效果提升 40%。
活細胞樣本:避免毒性損傷:選擇無毒性的 Alexa Fluor 系列酪胺探針,孵育時用含 2% BSA 的培養基替代普通緩沖液,減少細胞應激導致的自發熒光。

關鍵節點強化清洗:HRP 二抗孵育后、酪胺反應前,用含 0.1% Tween-20 的 PBS(PBT)在搖床上清洗 3 次,每次 10 分鐘,比常規 PBS 清洗減少 60% 的游離 HRP 殘留。酪胺反應終止后,立即用冰冷 PBT 快速沖洗 2 次,終止未反應的活化中間體。
多重染色加 “洗脫驗證”:做多重 TSA 染色時,每輪染色后需驗證抗體洗脫效果 —— 用洗脫液(如酸性甘氨酸緩沖液)處理后,加二抗直接孵育,若無信號則證明洗脫徹底,避免下一輪交叉污染。
濾光片選 “窄帶寬款”:例如檢測 Cy3 標記的信號時,選用帶寬≤20nm 的濾光片,而非通用型寬帶寬濾光片,可減少 90% 以上的串色干擾。若設備濾光片固定,可通過 “染料亮度匹配” 規避:低豐度靶標用高亮度染料(如 Alexa Fluor 647),高豐度靶標用低亮度染料(如 FITC),避免強信號溢出。
設置 “信號閾值” 定量篩選:用成像軟件設定信噪比閾值(建議≥10:1),自動剔除低于閾值的背景信號。例如 Opal 染色中,將 Opal Intensity Level 控制在 5-20 之間,既保證信號強度,又避免過飽和。
陰性對照:不加一抗,僅做二抗 + 酪胺反應,排查試劑本身的非特異性沉積;
空白對照:不加酪胺試劑,僅做抗體孵育,驗證抗體本身的熒光或顯色信號;
單染對照:多重染色時,每個靶標單獨染色,與多染結果對比,排查交叉反應導致的背景。
選型優先:單抗 + 可控活性酪胺 + 雙重抑制劑,三者缺一不可;
優化核心:先做 “抗體 - 酪胺雙梯度測試”,再定最終參數;
對照必做:陰性對照排除試劑干擾,單染對照驗證特異性。
